Репродуктивна медицина
Від грецьких ᾠόν — «яйце» та κύτος — «клітина».
English: oocyte; egg cell
Deutsch: Oozyte; Eizelle
Зміст статті
Визначення
Ооцит — жіноча статева клітина на етапі мейотичного розвитку. У людини розрізняють первинний ооцит, який ще не завершив перший поділ мейозу, і вторинний ооцит, утворений після цього поділу. Для запліднення в циклах IVF/ICSI зазвичай використовують вторинний ооцит на стадії метафази II (MII).
Ооцит, яйцеклітина та фолікул
У клінічній мові «ооцит» і «яйцеклітина» часто використовують як синоніми; український варіант «овоцит» позначає ту саму клітину. Біологічно слово «ооцит» охоплює кілька стадій дозрівання, тому в лабораторному описі потрібно зазначати конкретну стадію.
Фолікул — комплекс ооцита та соматичних клітин яєчника. Ооцит не є фолікулом, а число антральних фолікулів не дорівнює числу зрілих яйцеклітин, які буде отримано під час пункції. Кумулюс-ооцитарний комплекс (COC) включає ооцит і навколишні клітини кумулюса.
Будова
Ооцит — велика клітина з вираженим цитоплазматичним об’ємом. Її будова забезпечує не лише участь у заплідненні, а й підтримку початкового розвитку ембріона.
| Структура | Основне значення |
|---|---|
| Ооплазма | Містить органели, білки та материнські РНК, потрібні для активації ооцита й раннього розвитку. Функціональна готовність цитоплазми не визначається лише зовнішнім виглядом клітини. |
| Оолема | Плазматична мембрана ооцита; бере участь у взаємодії та злитті зі сперматозоїдом при звичайному заплідненні. |
| Прозора оболонка — zona pellucida | Позаклітинна глікопротеїнова оболонка навколо ооцита та раннього ембріона. |
| Перивітеліновий простір | Ділянка між оолемою і прозорою оболонкою; тут може бути видно полярне тільце. |
| Кортикальні гранули | Після активації вивільняють вміст і сприяють змінам оболонок, що обмежують поліспермію. |
| Кумулюс і променистий вінець | Соматичні клітини, які підтримують ооцит і обмінюються з ним сигналами та метаболітами. |
Оогенез і мейотичні зупинки
Оогонії походять із первинних статевих клітин. Ще до народження частина клітин вступає в мейоз і стає первинними ооцитами. Після реплікації ДНК вони зупиняються у профазі I, переважно на стадії диплотени, у так званому диктіатному стані. Ця зупинка може тривати десятиліттями.
У фолікулі, здатному до овуляції, сигнал лютеїнізувального гормону (ЛГ) запускає відновлення мейозу. Після завершення першого поділу утворюються вторинний ооцит і перше полярне тільце. Вторинний ооцит переходить у метафазу II й знову зупиняється.
Зазвичай саме клітина на стадії MII овулює. Запліднення викликає активацію ооцита, завершення другого поділу мейозу та виділення другого полярного тільця. Надалі формуються материнський і батьківський пронуклеуси зиготи.
GV, MI та MII: що означає зрілість
В ембріологічній лабораторії стадію ядерного дозрівання встановлюють за доступними морфологічними ознаками. Після видалення клітин кумулюса можна оцінити наявність гермінального пухирця або першого полярного тільця.
| Стадія | Ознака та біологічний стан | Хромосомний набір і ДНК |
|---|---|---|
| GV — germinal vesicle | Видиме ядро — гермінальний пухирець; первинний ооцит у профазі I. | 2n, 4C: 46 хромосом, кожна з двох хроматид. |
| MI — metaphase I | Гермінальний пухирець уже не видно; першого полярного тільця ще немає. Клінічна категорія може включати й перехідні стадії після руйнування ядра. | До розходження гомологів — 2n, 4C. |
| MII — metaphase II | Вторинний ооцит; перше полярне тільце є стандартним непрямим орієнтиром завершення мейозу I. | n, 2C: 23 хромосоми, кожна з двох хроматид. |
n означає число наборів хромосом, а C — відносну кількість ДНК. Гаплоїдний ооцит MII має подвоєний вміст ДНК щодо гаплоїдного сперматозоїда: сестринські хроматиди ще не розділилися.
Перше полярне тільце не гарантує завершеної організації веретена MII, нормальної кількості хромосом або повної цитоплазматичної зрілості. Ядерне дозрівання та розвиткова компетентність пов’язані, але не тотожні.
Кількість, якість і вікові зміни
Під «якістю ооцита» зазвичай мають на увазі здатність до нормального запліднення та подальшого розвитку. Це узагальнене поняття, а не один лабораторний показник. АМГ і AFC відображають переважно кількісну складову оваріального резерву; вони не визначають хромосомний статус окремої клітини.
З віком змінюються механізми точного розподілу хромосом, зокрема збереження зв’язку між ними та робота веретена поділу. Це підвищує ризик анеуплоїдії. Водночас вік не дозволяє встановити результат для конкретного ооцита до його подальшого розвитку.
У клінічній практиці виходять із переважно пренатального формування запасу ооцитів. Дослідження людської кори яєчника не підтвердили існування клінічно придатного пулу оогоніальних стовбурових клітин, який забезпечував би відновлення цього запасу. «Омолодження яєчників» не слід подавати як доведений спосіб утворення нових яйцеклітин.
Ооцит у програмі IVF/ICSI
Оваріальна стимуляція підтримує ріст кількох фолікулів доступної когорти, а не створює нові ооцити. Тригер фінального дозрівання і час пункції фолікулів узгоджують із протоколом, відповіддю яєчників та ризиком ускладнень.
Після отримання COC лабораторія забезпечує ідентифікацію, простежуваність і контроль умов роботи. Для ICSI клітини кумулюса видаляють і визначають зрілість; ін’єкцію зазвичай проводять в ооцит MII. При звичайному IVF ооцит інсемінують сперматозоїдами в оточенні клітин кумулюса.
У звіті потрібно розмежовувати кількість отриманих ооцитів, кількість MII, нормально запліднених клітин та сформованих бластоцист. Зниження числа на кожному наступному етапі має різні можливі причини й не повинно автоматично приписуватися «поганій якості яйцеклітин».
Морфологічні особливості ооплазми, оболонки та полярного тільця документують за стандартизованими критеріями. Поодинока нетипова ознака часто має обмежену прогностичну цінність; рішення щодо використання клітини не слід зводити до суб’єктивної оцінки її вигляду.
Кріоконсервація та дозрівання in vitro
Вітрифікація ооцитів використовується для збереження фертильності за медичними та іншими показаннями. Прогноз залежить, зокрема, від віку на момент отримання клітин, кількості збережених зрілих ооцитів та результатів подальших лабораторних етапів. Збережені клітини дають майбутню репродуктивну можливість, але не гарантують живонародження.
Дозрівання ооцитів in vitro (IVM) означає досягнення зрілості поза організмом. Запланована програма IVM і додаткове культивування незрілих клітин після стимульованого циклу — різні клінічні ситуації. Поява полярного тільця під час культивування сама по собі не доводить, що розвитковий потенціал став еквівалентним потенціалу ооцита, який дозрів in vivo.
Джерела
Джерела: 11
Настанови та публікації, використані під час підготовки статті.
- ESHRE/ALPHA. The Istanbul consensus update: oocyte and embryo morphological assessment. Human Reproduction. 2025. DOI: 10.1093/humrep/deaf021.
- UNSW Embryology. Oocyte Development. Навчальний ресурс з ембріології людини.
- UNSW Embryology. Cell Division — Meiosis. Навчальний ресурс з ембріології людини.
Показати всі джерела (11)Згорнути список джерел
- ASRM. Testing and interpreting measures of ovarian reserve: a committee opinion. Fertility and Sterility. 2020;114:1151–1157.
- Gruhn JR et al. Chromosome errors in human eggs shape natural fertility over reproductive life span. Science. 2019;365:1466–1469. DOI: 10.1126/science.aav7321.
- Wagner M et al. Single-cell analysis of human ovarian cortex identifies distinct cell populations but no oogonial stem cells. Nature Communications. 2020;11:1147. DOI: 10.1038/s41467-020-14936-3.
- ESHRE. Ovarian Stimulation for IVF/ICSI. Update 2025; current online version September 2026.
- ESHRE. Recommendations on Good Practice in the IVF laboratory. Human Reproduction. 2026. DOI: 10.1093/humrep/deag096.
- ESHRE. Guideline: Female Fertility Preservation. 2020.
- ASRM. Intracytoplasmic sperm injection for nonmale factor indications: a Committee opinion. 2026.
- ASRM. In vitro maturation: a committee opinion. Fertility and Sterility. 2021;115:298–304.
